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本试剂盒采用高效、专一的吸附柱，特异性结合核酸分子，去除杂质，提取血液中的基因组DNA。提取的基因组DNA纯度高，片段大，质量稳定可靠。使用本试剂盒得到的DNA可适用于各种常规操作，包括酶切、PCR、文库构建、Southern杂交等实验。

• 样品应避免反复冻融，否则会导致提取的DNA片段较小且提取量下降。
  
• 若有的缓冲液出现沉淀，可在37℃水浴中重新溶解，摇匀后使用。
  
• 所有离心步骤均为使用台式离心机，室温下离心，速度为12000rpm(~13400×g)。

• 样品处理
  
  • 含无核红细胞的血液样品(如人血液)(本产品适用于处理已添加抗凝剂的100μL～1mL血液样品)：当血液样品体积小于200μL时，可加缓冲液GP补足体积至200μL，再进行下一步实验(如血液样品体积为200μL，可直接进行下一步实验，不需加入GP)。
    
  • 含无核红细胞的血液样品：当血液样品体积超过200μL时，需用细胞裂解液CL处理，具体步骤如下：
    在样品中加入1～2倍体积的Buffer CL，充分混匀，室温放置1min，10000rpm离心1min，弃上清。用500μL Buffer TE重悬沉淀，10000rpm离心1min，弃上清(若沉淀量较多，可再用Buffer TE洗涤一次沉淀)，向沉淀中加入200μL Buffer GP，混匀。
    
  • 如果处理血样为禽类、鸟类、两栖类或更低级生物的抗凝血液，其红细胞为有核细胞，因此处理量为5～20μL，可加缓冲液GP补足200μL后进行后续的裂解步骤。
    
  • 凝固血块：取0.1g凝固血块，用液氮充分研磨，加入100μL Buffer CL，充分混匀，室温放置1min，10000rpm离心1min，弃上清。用500μL Buffer TE重悬沉淀，10000rpm离心1min，弃上清(若沉淀量较多，可再用Buffer TE洗涤一次沉淀)，向沉淀中加入200μL Buffer GP，混匀。
    注意：如果需要去除RNA，可加入4μL RNase A(100mg/ml)溶液(客户自备)，振荡15sec，室温放置5min。
• 加入20μL Proteinase K(20mg/ml)溶液，混匀。
  
• 加入200μL缓冲液GB，充分颠倒混匀，56℃放置10min，其间颠倒混匀数次。
  
• 加入200μL无水乙醇，充分振荡混匀，此时可能会出现絮状沉淀，不影响DNA的提取和应用。
  
• 将上一步所得溶液和絮状沉淀都加入一个吸附柱G1中(吸附柱放入收集管中)，静置2min，12000rpm离心30sec，倒掉废液，将吸附柱G1放回收集管中。
  
• 向吸附柱G1中加入500μL缓冲液GD(使用前请先检査是否已加入无水乙醇)，12000rpm离心30sec，倒掉废液，将吸附柱G1放入收集管中。
  
• 向吸附柱G1中加入600μL漂洗液PW(使用前请先检査是否已加入无水乙醇)，12000rpm离心30sec，倒掉废液，将吸附柱G1放入收集管中。
  
• 重复操作步骤7。
  
• 将吸附柱G1放回收集管中，12000rpm离心2min，倒掉废液。将吸附柱G1置于室温放置数分钟，以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。
  注意：这一步的目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除，漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切、PCR等)实验。
  
• 将吸附柱G1转入一个干净的离心管中，向吸附膜的中间部位悬空滴加50～200μL洗脱缓冲液EB，室温放置2～5min，12000rpm离心1min，将溶液收集到离心管中。
  注意：洗脱缓冲液体积不应少于50μL，体积过小影响回收效率。为増加基因组DNA的得率，可将离心得到的溶液再加入吸附柱G1中，室温放置2min，12000rpm离心1min。洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。若用ddH2O做洗脱液应保证其pH值在7.0～8.5范围内，pH值低于7.0会降低洗脱效率；且DNA产物应保存在-20℃，以防DNA降解。